Главная

Введение

Основные понятия мембранной биоэнергетики

Специфические методы мембранной биоэнергетики

Первичные ΔμH - генераторы

H+ -АТФазы - вторичные ΔμH - генераторы

Потребители ΔμH

Регуляция, транспорт и стабилизация протонного потенциала

Натриевый мир

Некоторые итоги и перспективы мембранной биоэнергетики (заключение)

Содержание

Н+-Трансгидрогеназа

Обратимый перенос гидрид-иона (Н-) между НАД и НАДФ (уравнение 30) катализируется ферментами, называемыми транс-гидрогеназами:

Такого рода ферментативная активность впервые была описана в 1952 г. С. Коловиком, Н. Капланом и др. В 1963 г. Л. Даниэльсон и Л. Эрнстер обнаружили, что энергизация субмитохондриальных пузырьков резко сдвигает равновесие реакции (уравнение 31) вправо, т. е. в сторону образования НАДФН. В результате соотношение
оказывается порядка 500. В неэнергизованном состоянии это соотношение близко к единице, что вполне понятно, поскольку редокс-потенциалы пар НАДН/НАД+ и НАДФН/НАДФ+ различаются всего на 5 мВ.

В 1966 г. П. Митчел постулировал, что трансгидрогеназа представляет собой дополнительный пункт энергетического сопряжения в дыхательной цепи. Предполагалась, что окисление НАДФН посредством НАД+ (прямая реакция) генерирует ΔμH того же направления, что и дыхание, а обратный процесс потребляет ΔμH, образуемую дыханием.

В рамках этой концепции сдвиг равновесия трансгидрогеназной реакции при энергизации есть прямое следствие энергетических соотношений трансгидрогеназы и других ΔμH-генераторов дыхательной цепи. Свободная энергия процесса превращения субстрата 5 в продукт a может быть рассчитана как

где ΔG0 есть изменение свободной энергии при [S] = [Р]. Во всех ΔμH-генераторах, за исключением трансгидрогеназы, ΔG0 достаточно велико - порядка 30-45 кДж-моль-1. И только в трансгидрогеназной реакции ΔG0 близко к 0. Поэтому данный фермент не может составить конкуренции дыхательной цепи или АТФазе в качестве генератора ΔμH, если только произведение [НАДФН] [НАД+] не окажется на несколько порядков выше, чем [НАДФ+] [НАДН], что, конечно, вряд ли может произойти в реальных условиях.

Механизм, предложенный П. Митчелом, предполагает, что перенос Н- от НАДФН к НАД+ должен образовывать ΔψH того же направления, что дыхание, а перенос Н~ в противоположную сторону -Δψ обратного знака. В обоих случаях_добавление продуктов реакции должно снижать величину ΔμH. Опыты, проведенные Е. А. Либерманом с сотрудниками и группой автора, подтвердили эти предположения. Найдено, что вывернутые субмитохондриаль-ные пузырьки, хроматофоры Rh. rubrum и протеолипосомы с очищенной трансгидрогеназой генерируют Δψ (" + " внутри пузырька) при окислении НАДФН посредством НАД+. Окисление НАДН посредством НАДФ+ также образовывало Δψ, но внутри был знак "-". Как та, так и другая Δψ исчезали при уравнивании концентраций субстратов и продуктов реакции. Генерируемые Δψ оказались линейной функцией соотношения

Сделано заключение, что трансгидрогеназная система в вывернутых субмитохондриальных пузырьках и хроматофорах катализирует следующий процесс:
Если дыхательные или фотосинтетические генераторы образуют ΔψH, благоприятную для выхода H+ВН, то реакция сдвигается влево.

Число протонов, переносимых при одном обороте трансгидроге-назы, остается неясным: обсуждаются величины от 0,5 до 2.

Недавно М. Балчевски и соавторы продемонстрировали синтез ФФН из ФН за счет энергии окисления НАДФН посредством НАД+ в хроматофорах Rh. rubrum.

Электрогенная активность трансгидрогеназы чувствительна к протонофорам и ДЦКД. В дальнейшем эффект ДЦКД был детально изучен Я. Хатефи, Р. Фишером и их коллегами. Оказалось, что для выключения протон-транспортной активности трансгидрогеназы достаточно добавить 0,5 моля ДЦКД на 1 моль фермента, принимая молекулярную массу последнего равной 120 кДа. Такая стехиометрия может объясняться димерной организацией трансгидрогеназы.

В Е. coli аналогичный фермент состоит из двух полипептидов, суммарная масса которых чуть меньше таковой мономера мито-хондриальной трансгидрогеназы. При включении в протеолипосомы фермент из Е. coli образует ΔμH. Процесс блокируется ДЦКД, связывающимся с большей (50 кДа), но не с меньшей (47 кДа) субъединицей.

Существенным моментом трансгидрогеназного механизма является то обстоятельство, что при этой реакции происходит прямой стереоспецифический перенос Н- между положением А никотин-амидного кольца НАД и положением В такового НАДФ. При этом не происходит обмена протонами с водой. Следовательно, протоны, транспортируемые ферментом через мембрану, не идентичны тем протонам, которые переносятся от одного никотинамиднуклеотида к другому при трансгидрогеназной реакции.

ΔμH не только смещает равновесие в сторону восстановления НАДФ+, но и резко ускоряет этот процесс. Показано, что ΔμH снижает Km трансгидрогеназы для НАДФ+ с 40 до 6,5 мкМ и повышает Km для НАД+ с 28 до 43,5 мкМ. Таким образом, ΔμH благоприятствует восстановлению НАДФ+ и затрудняет восстановление НАД+.

Безусловно, главная функция Н+трансгидрогеназы состоит в поддержании высокого соотношения [НАДФН]/[НАДФ+], что стимулирует восстановительные синтезы. Последние включают, как правило, один или несколько этапов, на которых происходит окисление НАДФН. Фактически энергия, вырабатываемая дыхательной или фотосинтетической редокс-цепью в виде ΔμH, становится при посредничестве трансгидрогеназы дополнительной движущей силой восстановительных биосинтезов:

Такой эффект имеет место в митохондриях и в подавляющем большинстве бактерий, у которых отсутствует нециклическая фотоцепь.

В хлоропластах и цианобактериях проблема поддержания высокого соотношения [НАДФН]/[НАДФ+] решается восстановлением НАДФ+ в качестве конечного акцептора электронов редокс-цепи. Неудивительно, что Н+-трансгидрогеназа в хлоропластах отсутствует.

Другие системы обратного переноса восстановительных эквивалентов


Fatal error: Cannot redeclare str2hex() (previously declared in /work/snake/static/client/base-disp_none.php:2) in /work/snake/static/client/base-disp_none.php on line 6